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극성일수록 전개가 되지 않아야 하는데 C-18 카트리지 실험에서 극성을 보였던 노란색이 실리카겔을 이용한 실험에서 파란색보다 더 전개되었다. 이러한 오차의 원인에는 여러 가지가 있을 수 있다. 우선 TLC판의 실리카겔이 고루 묻혀져 있지
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chromatography를 실행하여 DNA에 붙은 Taq pol을 순수하게 분리해낼 수 있다. sample에 loading 한 후, washing과정을 거쳐 elution하여 Taq pol이 포함된 용액을 받아낸다.
실험결과, 우리조의 cell sample에는 100ug 중 8ug의 Taq pol이 들어있었으며, 처음 3day 실험과
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실험을 하지 못한 것도 있지만 TLC plate의 길이가 짧아, 전개용매가 TLC plate를 타고 올라오는 시간이 충분치 못했던 것도 한 이유이다. 아마 TLC plate가 길었더라면 좀 더 정확한 결과 값을 도출할 수 있었을 것이다. 그리고 TLC plate에 모세관으로
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극성을 갖는다고 하는데 위 실험을 통해 극성화합물은 극성 용매에 잘 녹는다는 것을 알 수 있어TEk. 각가의 용질이 고정상에 대해 서로 다른 분배 계수를 갖는 이유는 용질 분자와 고정상을 이루는 물질 사이에 상호작용하는 힘이 다르기 때
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Chromatography)
2. 6. 1 분자량
3. 실험방법
3. 1 분자량 측정
3. 2 Conversion 측정
3. 3 주의사항
4. 실험결과
4. 1 실험 Data
4. 2 분자량
4. 3 Conversion
5. 결론
5. 1 분자량 측정
5. 2 Conversion
5.
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관찰한다.
실험C. 컬럼크로마토그래피를 이용한 색소의 분리(정상 크로마토그래피)
①10mL주사기를 수직으로 세우고, 긴 유리봉으로 유리솜을 넣어 아래를 막아 충진제가 빠지지 않도록 한다.
②1-부탄올(CHCHCHCHOH)과 암모니아수(2M)DMF 6:2로 잘
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Chromatography
2. 2. 1 정의
2. 2. 2 Carrier gas
2. 2. 3 Sample introduction
2. 2. 4 Column
2. 2. 5 Detectors
2. 2. 6 Calibration
3. 실험방법
3. 1 상평형
3. 2 Gas Chromatography
4. 결과
4.1. Gas Chromatography
4.2. Temperature
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관 안에 들어 있을 때 똑바르게 넣어지지 않아서 크로마토그래프가 일직선을 그리며 종이의 중앙을 지나지 않은 것 같다. 실험을 수행 할때 시험관을 평행하게 놓고 종이도 똑 바르게 넣어야겠다.
6. 참고문헌
♠크로마토그래피 - 액체 크로마
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관찰한다.
6. 실험기구 및 시약
<실험A> 500ml 비커, 시계접시, 모세관, TLC판 적색40호·황색5호·청색1호 식용색소, 전개제(1-뷰탄올:아세트산:물=60:15:25)
<실험B> C-18카트리지, 적색40호·황색5호 또는 6호·청색1호의 묽은 혼합용액, 청색1호
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빨리 끝내기 위해서 작은 크기의 TLC 사용으로 시료가 충분하게 올라가지 않은 상태로 Rf값 을 측정한 것도 오차의 원인이 되었을 것이다. 다음번에 하게 된다면 좀 더 충 분한 크기의 TLC를 사용하고, 전개제가 증발하지 못하도록 밀폐된 실험
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