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의 원인이 될 수 있다고 추정하였다. 위의 TLC판을 살펴보면 TG의 중간에 Spot들이 생긴 것을 확인할 수 있는데 불순물의 영향을 받아 유리지방산과 결합된 탓에 나타나는 것이다.
얇은 층 크로마토그래피(Thin Layer Chromatography, TLC)는 깨끗한 유리
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래에서 위치한 순서대로 노랑색 ＞ 빨강색 ＞ 파랑색 임을 알 수 있다. 30% 메탄올 수용액 또한 극성용매이므로 같은 순서로 위치하나 극성이 보다 약해(디스커션 참조) 경계가 명확하지 않게 된다.
※ 정상크로마토그래피와 역상크로마토그래
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크로마토그래피의 봉우리 면적을 측정하는 여러 가지 방법이 있다. 플래니미터법, 높이X반높이나비법, 오려내서 무게를 다는 법, 삼각형법, 원반적분계법, 전자식 디지털 전분계법 등이 있다. 이번실험에서 봉우리 면적을 측정할 때에는 삼각
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크로마토그래피는 화합물들의 혼합 상태를 구성 성분들로 분리하는 방법이다. 각각의 구성 성분들로 분리함으로써, 다양한 시료 성분들을 정성적으로 그리고 정량적으로 쉽게 측정할 수 있다.
실험 방법
1. 20×20cm TLC를 유리칼로 손상되지 않
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크로마토그래피에 대해 설명하라.
관 크로마토그래피는 미립자모양의 충진제로 채운 칼럼에 시료용액을 주입하여, 출구에서 유출하는 용액을 분획 수집기 등으로 분획한다. 목적분자의 검출법을 널리 선별 할 수 있고, 분취나 분석에도 적합
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크로마토그래피를 통하여 색소를 따로 얻어낸 다음 말려서 농도를 측정한다. 시간이 요구되는 작업이지만 정밀함에서는 그나마 나은 편이라고 생각된다.
실험 C. 컬럼 크로마토그래피를 이용한 색소의 분리
1. 나오는 순서 : 청색 : 황색 : 그
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크로마토그래피에 의한 색소의 분리(정상 크로마토그래피)
100 mL 비이커, 시계접시, 모세관, TLC 판(폭 4 cm, 높이 6 cm 정도)
적색40호, 황색4호, 청색1호의 식용 색소
전개제 (1-뷰탄올: 아세트산: 물의 비가 60:15:25인 혼합용액)
실험B. C-18 카트리지
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크로마토그래피 (Colunm chromatography)
2) 크로마토그래피의 구성
(유기 분자의 극성과 전개용매, 고정상과의 상관관계)
Ⅲ. 실험기구 및 시약
Ⅳ. 실험과정
Ⅴ. 실험결과
Ⅵ. 고찰
- TLC와 칼럼 크로마토그래피 실험결과 비교와 차
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chromatography plate), 폭8cm 높이6cm 정도
B. 시약
적색 40호, 황색 5호, 청색 1호 식용 색소
전개제(developing solution), 1-부탄올:아세트산:물의 비가 60:15:25인 혼합 용액
5. 실험 방법
실험A. 얇은층 크로마토그래피에 의한 색소의 분리(정상 크로마토그래
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크로마토그래피에 넓게 번져 있었다. 엽록소 a와 b는 처음에는 구별하기 어려웠지만 전개가 많이 되었을 때는 구별하기엔 힘들지 않았다.
엽록소 a, b의 Rf값이 카로틴과 크산토필보다 작은 이유는 카로틴과 크산토필은 극성
구조이고, 엽록소
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