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① 2개의 작은병(vial)에 각각 나프탈렌과 벤조산을 0.1 g씩 넣은 후 디클로로메탄(dichloromethane) 5 ㎖를 넣고 녹인다.
② 다른 1개의 작은병(vial)에 나프탈렌과 벤조산 0.1 g을 넣은 후 디클로로메탄(dichloromethane) 5 ㎖를 넣어서 혼합용액을 만든다.
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점에서도 오차가 발생할 수 있다고 생각한다.
3. 문제
① 관 크로마토그래피(Column Chromatography) 만드는 과정에서 공기방울 이 생기면 안 되는 이유를 설명하시오.
크로마토그래피는 각 성분의 이동하는 정도에 따라서 혼합물을 분리하는 과정
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오. 이 경우 가장 좋은 eluent용액의 Rf값의 범위는 얼마인가?
TLC는 시료가 순수한 물질이라면 한 개의 점만 나타나고 혼합물이라면 그 구성물질의 수만큼 점이 나타난다. 이러한 TLC를 이용하면 극소량의 시료도 분리해 낼 수 있다. 또 소요되는
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e) 5 ㎖를 넣어서 혼합용액을 만든다.
③ 3개의 작은병(vial)에 eluent용액(dichloromethane)을 밑바닥에 약간 깔릴 정도로 넣는다.
④ TLC판을 6 ㎝ × 1 ㎝ 크기로 자른다.
⑤ 실험과정 ①,②에서 준비해 놓은 시료를 모세관을 이용하여 각각의 TLC판 하부
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K = = =
따라서 = 0.0072g
물에 남은 카페인의 양 = 0.80g - 0.0072g = 0.7928g
4. 참고문헌
http://terms.naver.com/entry.nhn?docId=427739&cid=42411&categoryId=42411
추출을이용한벤조산과나프탈렌의분리 예비레포트 1.실험결과
2.토의 및 고찰
3.문제
4.참고문헌
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크로마토그램에 새로운 봉우리가 나타나지 않아야 하며 그 중 한 봉우리의 높이가 증가하게 된다. 다른 분리과과 다른 농도에서 조작하여도 결과가 같으며 그 결과는 더욱 신빙성이 높아진다고 한다.
우리가 실험시간에 알아보지 못한 정량
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chromatography를 이용한 LDH 단백질의 정제
5. Ion exchange chromatography를 이용한 LDH 단백질의 정제
Ⅲ. 결론 (결과 및 고찰)
1. 단백질과 DNA의 정량 결과
2. 단백질과 DNA의 정량 결과
3. LDH의 활성 측정 결과
4. Gel filtration c
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분리를 한다. 1 서론 /6
1.1 α-Amylase
1.2 E. coli
1.3 S. lividan
1.4 Structure of cells and release area
2 본론 /21
2.1 E. coli A /21
2.2 E. coli B /47
2.3 S. lividan A /69
2.4 S. lividan B /87
3 결론
3.1 최적 Route 별 경제성 분석 및 최종 공정 도출 /101
3.2 민감
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분리가 어렵다는 문제가 새로 발생했지만 공정에서 발생하는 문제를 해결하는 능력을 기를 수 있었습니다.
이후 바이오 공정 전반에 대해 알고 싶어 '바이오화학제품 제조 기사' 자격증을 취득하였습니다. 취득 과정에서 upstream process 내 여러
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