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4. Purpose: 세포는 세포로부터 만들어진다는 세포설을 이해하고 생명의 생장이 세포분열에 의해 이뤄지고 있음을 이해 한다. 체세포 분열과정을 관찰하여 각 단계의 특징을 확인한다.
5. Materials: 현미경, 슬라이드글라스, 커버글라스, 핀셋, 면
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실험자 이름, 실험부위, 날짜)
③ Petri dish에 적정량의 LB agar를 붓고, 식혀 굳힌다.
④ LB agar가 굳으면, 멸균된 면봉으로 신체부위를 긁은 후, plate 위에 도말한다.
⑤ 배지는 뒤집어서 37’C incubator에서 배양한다.
⑥ 다음 날 colony를 관찰한다.
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10. 6%,12% 과산화수소 용액 200mL를 이용하여 3~9번과 같은 실험을 반복한다.
Ⅳ.관찰결과 및 논의
1) 3% 과산화수소의 반응속도
로그로 나타낸 3% 과산화수소의 반응속도
2) 6% 과산화수소의 반응속도
로그로 나타낸 6% 과산화수소의 반응속도
3) 12%
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) A형과 AB형
AO x AB = AA, AB, AO, BO ( A형 50% 확률, B형 25% 확률, AB형 25% 확률 )
AA x AB = AA, AB, AA, AB ( A형 50% 확률, AB형 50% 확률 )
4) A형과 O형
OO x AO = AO, OO, AO, OO ( O형 50% 확률, A형 50% 확률)
OO x AA = AO, AO, AO, AO ( A형 100% 확률)
3. 실험방법
1) 깨끗한 슬라이
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이용한다.
이번 실험에서는 T-DNA가 다른 genome에 삽입 되었는지와 몇 copy가 들어갔는지 확인하기 위해 Southern을 사용한다. Southern의 정의
Southern의 목적
Southern의 원리
Southern과 PCR의 비교
Southern의 응용
실험과정
실험 시 주의 사항
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원생생물에 대하여 많이 알게 되었지만, 원생생물의 종류가 단순히 모양만으로 파악할 수 없을 정도로 다양하다는 것도 느낄 수 있었다. 1.실험제목
2.실험목적
3.준비물
4.실험방법
5.유의사항
6.실험결과
7.결론 및 정리
8.고찰
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실험을 진행할 때 오류가 있었고 각 시료마다 들어있는 단백질의 양이 다르다는 것을 의미하므로 정확한 비교는 불가능하다고 판단된다.
5. 참고문헌
1) https://terms.naver.com/entry.nhn?docId=5141506&cid=60266&categoryId=60266
2)
https://m.blog.naver.com/PostView.nhn?
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479241
14.85178412
2.926944
-Real time PCR-
ct값
Target gene(CPT1)
Target gene(PPARa)
Reference Gene(b-actin)
Control(대조군)
27.85895
29.53164
16.37755
WY-14643(실험군)
27.93849
29.64599
16.87339
ct값
dCt(CPT1 - b-actin)
dCt(PPARa - b-actin)
Control(대조군)
11.4814
13.15409
WY-14643(실
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4. 실험목적 (Objective) :
시료가 이동상과 고정상에 분배되는 성질을 이용하여 혼합물에 포함된 성분들을 각각의 단일 성분으로 분리한다.
미지시료 속에 포함된 성분들을 분리하고 각 성분을 확인함으로써 크로마토그래피의 원리를 이해한
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맞추어 슬라이드글라스의 미생물을 찾는 것이 간단한 일이 아니기 때문에, 미생물 말고 다른 조금 더 큰 것을 먼저 올려놓고 현미경의 포커스를 조작하는 방법을 연습하며 익숙해 진다면 실험에서 더 좋은 결과를 얻을 수 있을 것이다.
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