황색포도상구균

목차

1. Introduction
(1)실험의 목적
(2) Staphylococcus aureusㅐ
(3) Lecithin
(4) Fibrin 형성 과정
(5) 선택배지(selective media)
(6) 분별배지(differential media)
(7) 강화배지(enrichment media)
(8) 수송배지 & 보존배지
(9) BPA(Baird Parker agar)
(10) BPA 배지 만들기 및 Egg-yolk tellurite 첨가물

2. Materials & Method
(1) Materials
(2) Method

3. Results

4. Discussion

5. Reference

본문내용

검출된 이유는 아무래도 희석배수가 높아짐에 따라 황색포도상구균의 수가 줄어들 수밖에 없다. 이미 희석배수에서 colony 수가 평균 101개 검출되었기 때문에, 이 colony 수는 식품공전에 따른 30~300 cfu/ml 범위에 속하기에 희석배수의 검출은 실험결과의 의미가 크지 않다고 볼 수 있다. 30~300 cfu/ml 유효범위에 속한 희석배수의 결과로 황색포도상구균의 실험결과를 얘기하자면, 대부분 검정색 colony 주변에 불투명한 환 또는 투명한 환을 형성하였다. 이 얘기는 lipase reaction과 lecithinase 및 protease reaction이 다량 발생했다고 볼 수 있다. 실험결과를 통해 희석배수에서의 colony 검출 결과는 다소 오차가 생겼다고 볼 수 있다. 1회 실험에서는 petri dish 희석배수에서 약 1/10배 만큼 colony 수가 줄어들어 비교적 이상적인 실험결과를 얻었다고 볼 수 있다. 그렇지만 2회 실험의 희석배수 실험결과에서는 colony가 5개 그치기 때문에, 약 1/16~1/18배만큼 줄어들었고 희석배수인 10배보다 더 크게 줄어들었음을 알 수 있다. 이와 같이 오차가 발생한 이유를 생각해보니, Micro-pipette으로 희석액 중앙이 아니라 좀 더 위에서 0.1mL 시료를 채취하였을 가능성이 있기 때문에 0.1ml 시료안에 황색포도상구균의 cfu/ml이 적게 들어가 있을 것이라고 판단한다. 그리고 시험관의 vortex mixer를 했음에도 불구하고 균질화가 잘 안될 가능성이 있기 때문에, 적절한 vortexing을 하지 못했다고 본다. 그리고 마지막 오차의 가능성으로는 petri dish에 옮기려고 했던 0.1ml 시료가 완벽하게 옮겨지지 않아서 발생한 오차일 가능성도 배재할 수 없다.
5. Reference
김신무. 1996. 임상세균학. 고려의학, p.53-54.
김정환 외 3명. 2004. 식품미생물학및발효식품학실험. 지구문화사, p.24.
박신인 외 1명. 2004. 식품미생물학실험서. 효일출판사, p.37-38.
강영희. 2008. 생명과학대사전. 아카데미서적, p.987.
오민희 외 3명. 2009. 황색포도상구균분리배지비교. 한국식품영양과학회지, p.606-608.
[식품미생물학실험]
담당교수님: 김왕준 교수님
황색포도상구균 배양 후 생균수 측정
전 공
식품공학과
학 번
2006111894
이 름
김 재 형
학 년
4 학년
실험조
2조

키워드

황색포도상구균,   staphylococcus,   PCA,   미생물배지