|
전기영동(electrophoresis)
(2) 원리
(3) 응용
2. Materials & Mathods
(1) 재료
(2) 시약
(3) 실험 방법
4. Result
(1)침전물의 색상
(2) 전기 영동 실험 결과(그림)
(3)결과 그림의 형태 분석
5.Discussion
(1)실험에 대한 고찰
(2)전기 영동 실험 결과
|
|
|
전기영동하여 겔 상에 나타난 띠의 상대적인 위치를 비교함으로써 그 크기를 측정할 수 있다//
전기영동은 이와 같은 원리를 이용하여 분자량 결정을 비롯하여 등전점이나 순도결정, 각 성분의 정량, 정제 등에 이용되고 있으며, 단백질이나
|
|
|
타입은 파지 DNA이 며 파지 클로닝 벡터로 이용될 때 필요.
3-1. 박테리어파지 DNA의 분리
※ 아가로스 젤 전기영동장치의 원리
※ Agarose gel 전기영동시 DNA의 이동에 영향을 주는 요인들
▶ 아가로즈(아가로스, Agarose)
Ⅵ. 참고 문헌 (Reforence)
|
|
|
전기영동 ( electrophoresis )
■ DNA 정량
(1) DNA의 농도측정 원리
(2) 분광광도계( Spectrophotometer)
4. 실험재료
5. 실험방법
■ 제한효소 처리 및 Plasmid DNA확인
■ UV-visible spectrophotometer를 이용한 Plasmid DNA의 순도분석
6. 결과
7. 토의
8. 결
|
|
|
(Chromatography)
-이온 교환 크로마토그래피(Ion-exchange chromatography)
-겔 여과 크로마토그래피(Gel filtration chromatography)
-친화 크로마토그래피(Affinity chromatography)
3) 겔 전기영동(Gel- electrophoresis)
3. 단백질 분리 및 정제 이용
4. 참고자료
|
|
|
HPLC · FPLC
◆ Affinity chromatography
◆ Ion-exchange chromatography
◆ Gel filtration
◆ 역상 chromatography
◆ 소수성 chromatography
◆ Electrophoresis
◆ 등전점 electrophoresis
◆ SDS-PAGE, 2D-PAGE
4. 참고문헌(Reference)……………………………-10-
|
|
|
순물이 많기 때문에 필요한 DNA만 쓰고 측정하기 위해서 한다. 또한 제한효소 처리를 해서 Plasmid DNA와 Insert DNA를 자를 때 정제를 하지 않으면 잘 잘리지 않기 때문에 중요한 단계이다. 따라서 DNA의 정제를 통해 순도를 높여 주어야 한다.
정량
|
|
|
순물을 removes하고, 최종적으로 TE 버퍼나 물로 재용해준다. 마지막 단계에서는 플라스미드 DNA의 농도와 순도를 확인하는 작업이 필요하다. 이를 위해 생화학적 방법이나 전기영동을 통해 DNA의 크기 및 순도를 확인할 수 있다. 이 과정들을 통
|
|
|
전기영동에서 흐릿한 띠가 나타나게 되었다. 실험재료 준비에서 충분한 양의 DNA를 확보하며, 실험과정 중에서 실수로 DNA가 담긴 용액을 손실하지 않도록 주의 한다.
일부 DNA의 손실에 의한 분자량의 변화 (DNA들간의 분자량의 차이 발생)정제
|
|
|
및 PCR 진행
5) 전기영동을 통한 결과 확인
6) PCR 생성물 정제 방법
7) DNA 염기서열 분석 및 BLAST 활용
4. 연구 결과
1) 미생물 수집 및 배양 결과
2) DNA 전기영동 결과 분석
3) PCR 생성물 정제 결과
4) DNA 염기서열 분석 결과
5. 결론 및 논의
|
|
메뉴펼치기
