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발생한 것 같다. 이번실험에서 우리는 Bradford 시약이 15ml가 필요했지만 만약을 대비해 20ml를 만들었다. 5X Bradford 시약을 1X로 희석해야 했기 때문에 물 16ml+Bradford 4ml를 혼합했다. 그런데 우리조는 정량을 잘못해서 20ml가 조금 넘었다. 이 또한 실
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Bradford 시약
Bradford시약에는 Coomassie G250 dye가 있는데 산성조건에서 단백질은 Coomassie dye에 결합하는데 이 결과로 붉은색(465nm에서 최대흡광)이던 dye는 푸른색(610nm에서 최대흡광)으로 스펙트럼 이동이 일어나게 된다. 두 가지 form의 차이는 595nm
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시약들과 반응을 할 수 있는데 생각을 하지 못하고 맨손으로 기구를 만졌던 것이 약간의 오차와 관련이 있는 것 같다. 또한 Bradford method 실험을 하면서 BSA 시약들에 Bradford solution을 넣고 vortex mixer에 섞어줘야 하는데 vortexing 할때의 시간이 오
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이용해 흡광도를 측정하여 standard물질인 BSA(Bovine Serum Albumin)나 BGG(Bovine Gamma Globulin)를 기준으로 자신의 시료에 단백질이 얼마만큼 들어있는지 측정하는 방법 Bradford Assay
실험 목적
실험 이론
시약 및 기구
실험 방법
실험 결과
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ard Curve를 구하기 위해 BSA를 이용하여 표준 용액을 만들어 흡광도를 측정하는 경우,
Blank에서의 그 값이 CBB 자체의 흡광성 때문에 0.4정도까지 높아진다.
따라서 이번 실험에서 Blank는 Bradford 시약을 제외한 순수 Buffer의 흡광도만을 측정하여
Curv
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