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차가 발생한 것 같다. 이번실험에서 우리는 Bradford 시약이 15ml가 필요했지만 만약을 대비해 20ml를 만들었다. 5X Bradford 시약을 1X로 희석해야 했기 때문에 물 16ml+Bradford 4ml를 혼합했다. 그런데 우리조는 정량을 잘못해서 20ml가 조금 넘었다. 이 또
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Protein 정량
2. 목 적(Abstract)
3. 원 리(Principle)
1) 구조
2) 기능
3) 합성
4) 정색 반응
(1) Biuret 반응
(2) Ninhydrin 반응
(3) Xanthoprotein 반응
(4) Millon 반응
(5) Hopkins-Cole 반응
(6) Sakaguchi 반응
(7) Nitroprusside 반응
4. 기구 및 시
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Protein folding 방지
0.1% bromophenol blue
전개시 표시를 해주는 dye
10% glycerol
용액에 잠기게 함
염색액(/L)
1g Coomassie Blue R-250
450ml methanol
450 H2O
100ml glacial acetic acid
탈색액(/L)
100ml methanol
100ml glacial acetic acid
800ml H2O
6. 실습 결과
1). 단백질의 정량
BSA 0
BSA
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protein의 비율이 일정하지 않은 점 또한 오차가 발생 할 수 있는 원인이라고 이야기 할 수 있다.
8. 참고문헌(Reference)
Activity
- Lehninger Principles of biochemistry, David L.Nelson/Michael M. Cox, 월드 사이언스, 2014, 95-96p
단백질 정량
- biochem.yonsei.ac.kr/board/lib/do
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단백질의 농도
Beer\'s law에 의해 A=0.18, ε=0.3, l=1
0.18=0.3×c×1
∴ c=0.6mg/ml
이 때 이 단백질은 로 희석되었다. 즉 로 희석되었다.
그러므로 희석되지 않은 단백질의 농도는 0.6mg/ml×19=11.4mg/ml
∴ 11.4mg/ml
12. Further Study
protein 정량 method 3가지
ⅰ) Ultraviole
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ProteinMethods.pdf
-http://translate.google.com/translate?hl=ko&sl=eneu=http://nmnf.epfl.ch Ⅰ. 서론
Ⅱ. 본론
1. 단백질과 DNA의 정량
A. 단백질의 정량
1) Bradford assay
2) Lowry method
B. DNA의 정량과 순도 측정
2. 단백질과 DNA의 정량
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정량적으로 비교할 수 있었다. 그리고 아래 데이터를 통해서 일정한 배지 조건에서 생산되는 전체 단백질(50%)을 구해냈고 나아가 α-Amylase(8.7%)의 조성비율까지 찾아냈다. 따라서 Eq. 2는 각각 α-Amylase(8.7%), CPs(41.3%), cell debris(49%), DNA(1%) 임을 구
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단백질분해효소 등이다. 간장과 된장을 비록한 각종 양조, 유기산 발효, 펙틴이나 녹말분해효소와 같은 효소제품제조 등 각종 발효공업에 다양하게 이용된다. 이 중 아밀라아제의 작용, 즉 녹말을 설탕으로 분해하는 힘을 이용하여 청주·감
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제된 단백질의 순도 분석, 유효성분 정량, 안정성 시험 등에서 활용했고, 데이터 신뢰도 확보를 위한 반복 측정과 Column 조건 최적화도 직접 수행했습니다. 익숙한 장비인 만큼 TT 과정에서 생산된 중간 산물의 품질 분석에도 기여할 수 있다고
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단백질 정량화 실험에 대해서 아는지?
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QA, QC 차이는 무엇인가요?
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PCR 원리에 대해서 말해주세요.
26
회계순환과정에 대해서 말해주세요.
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어떤 업무를 제일 잘 할 수 있을 것 같은지?
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우리 회사의 미래 전망에 대해서 어떻게 생각하시나
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