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fer를 넣은 후에 여과를 시켜, 실험수치의 오차가 많이 발생하였다. 이는 plasma 여과 전 e.q buffer를 넣게 되면 plasma와 resin의 결합 정도가 약해져서 정확한 수치를 얻을 수 없을 뿐 아니라, 처음 얻게되는 sample1 에 여과시킨 plasma뿐 아니라, e.q buffe
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gel과의 상호작용이 더 강하므로 이동상에 의한 이동이 느리다. 따라서 극성이 큰 물질일수록 값이 작으므로 미지시료에 목단피보다 극성이 큰 미지시료가 존재한다는 것을 알 수 있다.
5) TLC를 이용한 행인의 확인시험
실험1차) 행인과 미지시
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배경
DNA구조의 정의는 미국인 생화학자 어윈 샤가프(Erwin Chargaff)의 업적이 있지 않았다면 불가능한 일이었다. 테트라뉴클레오티드 가설은 샤가프 시대의 주류 이론으로서 피버스 레빈(Phoebus Levene)에 의해 주창되었다. 해당 이론은 ‘DNA는 아
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1. 실험 목적
2. 실험 내용
3. 실험 관련 이론
4. 실험 장치
5. 실험 방법
6. 실험 결과
7. 고찰
8. 결론
9. Reference
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이후에 AutoZero를 눌러 그래프의 영점을 맞춰준다. AutoZero를 이용하면 곡선으로 불안정한 그래프의 영점을 잡아주게 된다. 실험결과 그래프에서 노란색 점선이 영점을 잡아준 선이다. FPLC기계는 3가지로 시료의 흐름을 결정할 수 있는데 Waste, Lo
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Ⅰ. Protein Purification
단백질을 분리정제하려면 세포를 파쇄해야 한다. 단백질은 용해도, 크기, 전하, 그리고 결합 친화성에 따라 정제된다.
A. 균질화 (Homogenization) • 세포를 파쇄 하여 세포질 또는 세포 소기관으로부터 단백질을 수용액
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본다면 Arabinose가 더 빨랐겠지만 둘의 분자량의 차이는 매우 작은 편이고 용매의 차이에 따라 달라질 수 있다. Arabinose는 물에 녹을 수 있지만 glucose는 물에 녹지 않기 때문에 용매에 차이에 따라서 달아졌을 것이다.
5. 고찰
이번 실험은 HPLC라
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/L
따라서 용액 M에 들어있는 요액 Y와 용액 B의 비율은 약 6:1이다.
Beer-Lambert 법칙을 이용해서 구한 비율인 5:1과는 약간의 차이가 있지만
추세선은 근사해서 구한 그래프이기 때문에 Beer-Lambert의 법칙을 이용해서
구한 것이 더 정확하다고 본
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에 넣어라. 반점을 뚜렷하게 나타나면 유리판을 꺼내어 끝이 뾰족한 연필 또는 모세관으로ㅆ 반점을 가장자리를 표시하여라. 원래의 반점으로부터 용매 끝까지의 거리 및 각 반점까지의 거리를 재어 Rs값을 계산 하여라.
5.실험결과
6.논의 및
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관측높이 : 유도코일 상단으로부터 15∼18 ㎜의 범위에 측정하는 것이 보통이나 알카리원소의 경우는 20∼25 ㎜의 범위에서 측정한다.
분석선(파장)의 설정 : 일반적으로 가장 감도가 높은 파장을 설정한다.
조작순서
주전원 스위치를 넣고 유
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