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Vector)란?
- 왜 플라스미드를 벡터로 가장 많이 사용하는가?
3. 클로닝이란?
- 전기영동실험
- Blotting
4. 유전자치료란?
- Ex vivo
- In vivo
-유전자치료의 과정
-역전사
- 현재 유전자치료가 시행되는 유전병과 대상 유전자
- 마이크로어
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전기영동
plsmid DNA, Agarose, 0.5X buffer, 6X Loading dye, Elution buffer, EtBr(Ethidium bromide, Size marker, Electrophoresis, Gel cast, Tray, Comb, Micropipette, Polyglove, Microwave oven, UV transilluminator
2.실험 방법
1) 대장균의 형질전환
①-70℃ 냉동고에서 Competent cell을 꺼내어 얼
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F.Weaver 저. 박상대 역. 라이프사이언스 2003
최신 유전학. D. Peter Snustad, Michael J. Simmons 저. 김상구 역. 범한서적 2002
실험날짜
학 번
이 름
담당교수님
http://www.bioneer.co.kr/ 1. Abstract
2. Introduction
3. Material & Method
4. Result
5. Discussion
6. Reference
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전기 영동
5.실험 결과
6.고찰
이번 실험을 통하여 PCR을 통한 Gene cloning을 배웠다.
Gene cloning으로 DNA을 자르고 붙이고 변형시켜서 실험에 필요한 재조합 recombinant DNA을 제조하는데 중심을 둔 실험이었다. 재조합 DNA를 삽입하는 과정을 배우는 도
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시켜두고, 실험 과정에서 실험복과 실험 장갑을 반드시 착용해야 실험의 정확도를 높일 수 있다.
5. Reference
[1] pET-22b(+) vector Protocol
[2] 미생물 실험서/ 유민, 김병오, 이혜영 공저/ p.68-75 1. Abstract
2. Experiment
3. Result
4. Discussion
5. Reference
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전기영동 사진을 보면 uncut vector에는 여러 가지 형태의 band가 나왔지만 cut된 vector와 insert는 한 가지 형태의 band가 나온 것으로 보아 제한효소에 의해서 잘 잘려졌음을 알 수 있다. 따라서 실험에서 Ligation을 한다는 것은 이미 Insert와 Vector을 제
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실험에 쓰이기 때문에 정확한 양을 측정하는 것은 중요한 단계이다. 내가 추출한 DNA의 농도가 얼만지 알아야 다음단계를 완벽히 준비하여 정확한 실험이 되게 할 수 있으며, 또한 최대한 불순물을 제거하고 순도 높은 DNA를 추출하여야 vector에
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전기영동(electrophoresis)
PCR product purification
Ⅱ. 얻은 유전자를 vector에 삽입
1) Vector
※ Vector의 기능
※ Vector의 종류
2) Restriction enzyme
※ Recombinant DNA
※ 제한효소 (restriction enzyme)
3) DNA ligation과 T-vector를 이용한 PCR product의 cloning
Ⅲ.
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Abstract
이번 실험은 제한효소 (restriction enzyme)를 이용하여 vector를 절단한 후, agarose gel 상에서 전기영동하여 얻은 결과로 restriction mapping을 하는 것이다. Vector는 pBluescript Ⅱ를 사용하였으며 restriction enzyme은 BamHⅠ과 XbaⅠ을 사용하였다. 실험
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실험 방법
4. Western hybridization
4.1.1. SDS Polyacrylamide Gel electrophoresis
4.1.2. 이론적 배경
4.1.3. 실험방법
4.2.1. Western blotting
4.2.2. 이론적 배경
4.2.3 실험방법
5 ELASA
5.1. 이론적 배경
5.2. 실험방법
III. Results And Discussion
1. Gfp gene 확인
2. Southern
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